CHIP（Chromatin Immunoprecipitation，染色质免疫沉淀）是研究蛋白质与基因组 DNA 相互作用的经典技术，可用于检测特定转录因子、组蛋白修饰酶等在基因组上的结合位点，广泛应用于表观遗传学、基因表达调控等领域。

亿奥邦CHIP检测技术服务流程

送样要求（细胞样本）

1. 细胞类型与状态

需为活细胞，且培养状态良好（无污染、无明显凋亡或坏死）。

避免使用过度汇合（如 > 90%）的细胞，以免影响染色质结构。

2. 细胞数量

常规 CHIP：每样本推荐1×10⁷~5×10⁷个细胞（具体根据靶标丰度调整，低丰度靶标需更多细胞）。

微量 CHIP（如低丰度转录因子）：可能需要 1×10⁸个以上细胞。

3. 保存与运输

新鲜细胞：用 PBS 洗去培养基后，加入适量冰浴的 PBS（含蛋白酶抑制剂，如 PMSF），密封后4℃冷藏运输（24 小时内到达），避免冻存。

冻存细胞：若无法新鲜送检，可先用含 10% DMSO 的冻存液冻存（程序降温），然后 **-80℃保存 **，运输时用干冰（确保全程低温，避免反复冻融）。

备注：冻存细胞可能导致染色质断裂增加，优先推荐新鲜细胞。

4. 样本处理

细胞需离心沉淀（1000×g，5 分钟），弃上清，避免残留培养基或血清（可能干扰后续实验）。

标记清晰：样本管标注样本名称、细胞数量、处理日期。

送样要求（组织样本）

1. 组织类型与取材

新鲜组织：需立即取材（离体后 30 分钟内处理最佳），避免缺血、坏死（会导致染色质降解）。

组织大小：推荐100~500 mg / 样本（约黄豆至花生大小），过小可能导致细胞量不足，过大则需匀浆时充分破碎。

避免结缔组织过多的样本（如脂肪、纤维组织），这类组织细胞密度低，染色质提取效率差。

2. 保存与运输

新鲜组织：用预冷的 PBS 或组织保存液（如 RNAlater，部分实验室适用）浸泡，4℃冷藏运输（24 小时内到达）。

冻存组织：取材后立即用液氮速冻，然后转移至 **-80℃保存 **，运输时用干冰（避免反复冻融，否则染色质易断裂）。

注意：甲醛固定的组织（如 FFPE）不适合常规 CHIP，因固定会导致染色质交联过度，难以超声破碎和抗原修复。

3. 样本处理

去除组织表面的血液、脂肪、结缔组织等杂质，用预冷 PBS 清洗 2~3 次。

标记清晰：样本名称、组织类型、重量、取材时间。

动物组织 / 临床样本特殊要求

动物组织：

处死动物后需快速取靶组织（尤其是肝、肾等代谢旺盛的组织，避免自溶）。

若为小鼠等小动物组织，可直接整器官送检（如脾脏、脑组织），由实验室处理。

临床样本：

需符合伦理规范，提供样本来源的伦理审批文件。

肿瘤组织需确认肿瘤细胞比例（建议 > 70%），避免过多坏死组织。

实验结果图